NTUBST2019

• 台大植物科學所 博士 2011-2015
• 台大植物科學所 碩士 2006-2008
• 台大生命科學系 學士 2002-2006

植物受到「光」與「逆境」交互影響下的轉錄轉譯調控與訊息傳導分子機制研究

     環境逆境是降低作物產量最主要的原因，而轉譯調控又是植物抵抗逆境的重要步驟。建立並了解植物在光照與逆境交互影響下的轉譯調控機制與網路，在學術上不僅能回答長久以來植物如何調控轉譯的問題；經濟上可使用於作物基因改良，生產抵抗逆境又生長健全的作物。由於植物無法自由移動，所以需要適時藉由調控細胞內基因的表現與蛋白合成，來因應周遭環境的變化，以達成最適合的生長與發育狀態，而「光」是所有環境因子中影響植物生長與發育最明顯的一項。在植物中已發現有多種光接受體的存在，使植物能夠解讀環境中的「光」在強度與波長分布的動態變化，藉由下游訊息傳導，驅動與調節基因與蛋白的表現。我們的研究著重於了解植物如何藉由轉錄和轉譯作用來調控訊息傳導的機制，進和影響植物對光的敏感度以及逆境的耐受度等特性。詳細目標如下:
 
1.    建立植物在光照與逆境交互影響下的轉譯調控機制與網路，藉由核醣體圖譜(Ribosome profiling)以及高通量核醣體RNA測序(Ribosome-associate RNA sequencing)，來分析光訊息負調控子之突變體與過表達轉殖植物的轉譯體(Translatome)來得到光和逆境交互影響下選擇性合成的蛋白，並且建構階層性的轉譯調控網絡，以建立未來可利用在生物工程的模板。

2.    利用共同免疫質譜技術找出與光訊息負調控子之交互作用蛋白，再透過一系列的磷酸化、泛素化以及蛋白交互作用的轉譯後修飾的功能性測試，建立光訊息負調控子與其交互作用蛋白對其受質轉錄因子或轉譯啟動因子在光與逆境交互影響下的調控機制，來奠定光與逆境如何去調節轉譯作用的理論基礎。

3.    抗逆境之植物轉殖:透過基因工程來做模式植物轉殖，用以進行多種光與逆境的生理測試來分析轉譯或轉錄調控網絡中選擇性合成蛋白的功能，試圖找到幫助抵抗逆境的關鍵因子。
 

• 國立臺灣大學 生化科技學系 助理教授 2020/02～now
• 美國德州大學奧斯丁分校博士後研究員 2017-2019
• 台大植物科學所博士後研究員  2015-2017

• 美國植物生物學會2023年度女性年輕研究學者旅行獎助
• 110年度台大教學優良獎
• 109年度台大勇源拔粹學者講座
• 108年度科技部年輕學者5年期愛因斯坦計畫 2020-2025
• 105年度科技部博士後千里馬計畫 2017-2019

1. Chang, H.H., Huang, L.C., Browning, K.S., Huq, E. and Cheng M.C. (2024) The phosphorylation of carboxyl-terminal eIF2α by SPA kinases contributes to enhanced translation efficiency during photomorphogenesis. Nature Communications 15: 3467. (5-yr IF: 17.0)
2. Lin, W.C., Chang, H.H., Huang, Z.-B., Huang, L.C., Kuo, W.C., Cheng, M.C. (2024) COP1-ERF1-SCE1 regulatory module fine-tunes stress response under light-dark cycle in Arabidopsis. Plant Cell & Environment 47: 1877-1894. (5-yr IF: 8.1)
3. Cheng, M.C., Kathare, P.K., Paik, I., Huq, E. (2021) Phytochrome signaling networks. Annu. Rev. Plant Biol. 72: 217-244. (5-yr IF: 30.5; #citation: 114)
4. Cheng, M.C., Enderle, B., Kathare, P.K., Hiltbrunner, A., Huq, E. (2020) PCH1 and PCHL directly interact with PIF1, promote its degradation and inhibit its transcriptional function during photomorphogenesis. Molecular Plant 13: 499-514. (5-yr IF: 22.6; #citation: 19)
5. Cheng, M.C., Wang, Y.M., Kuo, W.C., Lin, T.P. (2017) UBC18 mediates ERF1 degradation under light-dark cycles. New Phytologist 213: 1156-1167. (5-yr IF: 8.085; #citation: 24)
6. Chen, H.Y., Hsieh, E.J., Cheng, M.C., Chen, C.Y., Hwang, S.Y., Lin, T.P. (2016) ORA47 (octadecanoid-responsive AP2/ERF-domain transcription factor 47) regulates jasmonic acid and abscisic acid biosynthesis and signaling through binding to a novel cis-element. New Phytologist 211: 599-613. (5-yr IF: 8.085; #citation: 111)
7. Cheng, M.C., Ko, K., Chang, W.L., Kuo, W.C., Chen, G.H., Lin, T.P. (2015). Increased level of glutathione contributes to stress tolerances and global translational change in Arabidopsis. Plant Journal 83: 926-939. (5-yr IF: 6.292; #citation: 144)
8. Cheng, M.C., Liao, P.M., Kuo, W.W., Lin, T.P. (2013) The Arabidopsis ETHYLENE RESPONSE FACTOR1 regulates abiotic stress-responsive gene expression by binding to different cis-acting elements in response to different stress signals. Plant Physiology 162: 1566-1582. (5-yr IF: 8.7; #citation: 555)
9. Hsieh, E.J., Cheng, M.C., Lin, T.P. (2013) Functional characterization of an abiotic stress-inducible transcription factor AtERF53 in Arabidopsis thaliana. Plant Molecular Biology 82: 223-237. (5-yr IF: 3.903; #citation: 105)
10. Cheng, M.C., Hsieh, E.J., Chen, J.H., Chen, H.Y., Tsan-Piao Lin, T.P. (2012). Arabidopsis RGLG2, functioning as a RING E3 ligase, interacts with AtERF53 and negatively regulates the plant drought stress response. Plant Physiology 158: 363-375. (5-yr IF: 8.7; #citation: 223)